Ну всех подробностей даже сам Петритест не выдаёт, могу только сказать как я понял)))) В пробирке находится жидкая питательная среда+индикатор рН. Если в образце есть лакты, то они начинают размножаться и выделяют в среду метаболиты, в частности, молочную кислоту, на которую реагирует индикатор рН изменением цвета, так что полагаю, что чувствительность метода очень высока, приближается к 100% (ну 100% не бывает, но 95% очень возможно). А вот специфичность явно ниже, потому как могут же быть другие бактерии, выделяющие кислоту (уксуснокислые, например). Или пивовар регулирует рН молочной кислотой, тогда тоже будет ложноположительный результат.
А по поводу как, я лучше инструкцию выложу, но там реально всё просто.

Очень похоже на среду Бликфельда
Возможно, Петритест секретов не раскрывает))))
Кстати, я тут подумал и понял, что использование молочной кислоты в ходе варки не даст ложноположительный результат, т.к. даже если останется она в готовом пиве (что маловероятно), то изменит цвет сразу(возможно, именно для этого и идёт в комплекте буферный раствор), а не через 12-24 часа
Очень похоже на среду Бликфельда
Да, видимо это она и есть
https://yandex.ru/patents/doc/RU2701343C1_20190926
drbaton сказал(а)
Тем, что среда неспецифична для лактобактерий, другие бактерии тоже дают положительный результат.
а ты её для чего брал? Лакты разводить?
Найти среду только для лакт мне кажется сложно, т.к. стрептококи по сути братья им, если не родные, то двоюродные точно)
Плюс среда бликфельда она более широкая в плане применения (для молочнокислых м/о). Для лактобатерий лучше наверное какой нибудь лактобакагар, который фиг купишь или MRS среда.
MrDAnger сказал(а)
Если брал тест-систему смотреть на заразу, то любой кислотообразующий штамм в нормальном, не "порченном" пиве, нежеланный гость.
В том и вопрос какая цель покупки?
Если контроль заражения молочнокислыми м/о, то среда бликфельда самое то.
А вот если культивировать, то наверное лучше MRS или лактобакагар, либо каппустный агар (можно самому сделать дома)
Делюсь своим опытом. Выполнено 4 теста.

СПРАВА НАЛЕВО:
1) домашнее пиво; цвет пробирки жёлтый; результат истинно положительный; микроскопически определяются МКБ (см. Фото выше)
2) "домашние" дрожжи из физраствора (колония взята с чашки Петри, разброжена в 20 мл стерильного автоклавированного сусла и биомасса помещена в стерильный флакон с физраствором стерильным шприцом, хранение в холодильнике около 3,5 мес.); цвет бледно-жёлтый глазом (бледно-фиолетовый на фото, но моя камера плохо передаёт цвет); на просвет видны "хлопушки" и осадок, т.е. был рост культуры с естественным подкислением среды. Результат ложно/сомнительно положительный. Под микроскопом картинка непонятная: то ли краситель, то ли непонятные м/о. Палок не видно.

3) "домашние" дрожжи в стерильном сусле; цвет бледно-жёлтый глазом (бледно-фиолетовый на фото, но моя камера плохо передаёт цвет); на просвет видны "хлопушки" и осадок, т.е. был рост культуры с естественным подкислением среды. Результат ложно/сомнительно положительный
4) дрожжи из заводской пачки; цвет фиолетовый, но бледнее, чем контроль и на просвет видны "хлопушки" и осадок, т.е. был рост культуры с естественным подкислением среды. Результат отрицательный.
Вывод: специфичность тестов крайне низкая. Не только кислотпродуцирующие бактерии, но и дрожжи успешно растут на этой среде, смещают рН в сторону кислоты и тем самым меняют цвет индикатора. Возможно, производителю стоит задуматься о добавлении в среду антимикотика.
Итог: для домашнего использования тесты непригодны, только для фильтрованного/пастеризованного пива.
Мы уже обсуждали с drbaton эти результаты и почему цвета такие разные.
1. В среде бликфельда содержится все, что нужно для роста как дрожжей так и прочих бактерий: Пептон 5,0 г Лактоза 10,0 г Глюкоза 10,0 г Экстракт дрожжевой 10,0 г Бромкрезоловый пурпуровый 0,01 г Дистиллированная вода 1 л.
2. Как видно в данном составе есть пища в виде глюкозы (употребляется всеми мо) и лактоза (поедается в основном лактами и их родственниками). Однако количество еды очень мало, в перерасчете на плато около 2Р (для дрожжей так вообще 1Р, они не жрут лактозу ведь). Такой состав пищи рекомендуется для разведения лактобактерий, им много не надо.
3. Дрожжи как известно при брожении подкисляют среду. И разные штаммы кислят по разному: от 4 до 4,4. В среде есть еда, значит в любом случае дрожжи изменят цвет среды в зависимости от штамма. Даже чистые, не контаминированные дрожжи.
4. Теперь о результатах и цвете (как я думаю). Справа образец контаминированный, что подтвердил мелкоскоп. Визуально заметно, что цвет образца очень желтый. Три следующих образца имеют разный цвет, что скорее всего связано с особенностями конкретного штамма (разные штаммы кислят по разному, т.е. рН 4,4 до которого подкислит среду один штамм, будет существенно отличаться от рН 4 как в плане цвета, так и в плане общего количества кислоты в среде)








